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1. 基于B646L基因的基因I型和II型非洲猪瘟病毒鉴别诊断双重ARMS-qPCR方法建立及应用
DING Lei-lei, REN Tao, HUANG Lian-yu, Weldu TESFAGABER, ZHU Yuan-mao, LI Fang, SUN En-cheng, BU Zhi-gao, ZHAO Dong-ming
Journal of Integrative Agriculture    2023, 22 (5): 1603-1607.   DOI: 10.1016/j.jia.2023.02.035
摘要412)      PDF    收藏

非洲猪瘟(African swine feverASF)是由非洲猪瘟病毒(African swine fever virus, ASFV)引起的家猪和野猪的一种急性、烈性、高度接触性传染病,发病率和致死率可高达100%,是全球危害猪群最严重的传染病之一,严重威胁

全球养猪业、食品安全和经济发展。

20188中国首次爆发ASF疫情2021年,高毒力基因II型、低毒力基因II型和基因I型三种不同类型的ASFV陆续被报道。这使得ASFV感染的鉴别诊断更具挑战性。截止目前,仍无有效的预防疫苗和特效的治疗药物,因此,能够明确区分基因I型和IIASFV的鉴别诊断方法对于ASF有效预防和控制至关重要。在此,我们基于基因I型和IIASFV编码P72蛋白B646L基因C两个单核苷酸多态性(SNP)位点,利用突变阻滞扩增系统(ARMS)和定量实时PCRqPCR)技术开发了一种双重ARMS-qPCR方法。进一步研究显示,该方法标准曲线R2在0.992 - 0.999,线性关系良好;与PRRSV、CSFV、PRV、PCV2、PEDV、TGEV 和 PoRV 七种病原无交叉反应,具有较高的特异性;能够稳定的检测含有10个拷贝数的基因I型和IIASFV B646L基因的标准品质粒,敏感性较好;组间和组内变异系数均小于2.2%,重复性良好。此外,我们用18个基因I型和18个基因IIASFV感染样本,包括血液、口腔和直肠拭子、组织和细胞培养物对其进一步的验证并与动物世界卫生组织(WOAH)推荐的qPCR方法进行比对。结果显示,ARMS-qPCR方法成功鉴别诊断出36个基因I型和IIASFV感染样本且与WOAH推荐的qPCR方法检测的结果一致。因此,我们建立的ARMS-qPCR方法可用于检测和区分基因I型和基因II

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2. MICRO-CHEM PLUS消毒剂灭活非洲猪瘟病毒的效果评价
JIANG Cheng-gang, SUN Ying, ZHANG Fan, AI Xin, LU Ming, QIN Jia-lin, ZHANG Xian-feng, WANG Jing-fei, BU Zhi-gao, ZHAO Dong-ming, HE Xi-jun
Journal of Integrative Agriculture    2023, 22 (11): 3560-3563.   DOI: 10.1016/j.jia.2023.09.021
摘要270)      PDF    收藏

非洲猪瘟在我国爆发,给我国养殖业带来巨大的经济损失,目前无可用的商业化疫苗和药物,其相关研究限定于在高等级生物安全实验室中完成,生物安全防护中消毒剂的合理使用尤为重要。MICRO-CHEM PLUSMCP)作为一种复合型季铵盐类消毒剂在高等级生物安全实验室广泛使用,而针对非洲猪瘟病毒(African swine fever VirusASFV)的灭活效果未见相关报道。本文我们探究不同病毒载量、不同消毒剂浓度、不同作用时间及不同作用温度对于灭活非洲猪瘟病毒效果的影响。研究结果表明高病毒载量需要更高浓度的MCP才能将ASFV完全灭活,较低浓度的MCP需要延长作用时间才能达到完全灭活ASFV的效果,不同的作用温度对于MCP灭活ASFV的效果无影响。应用干雾消毒机将5%MCP进行房间喷雾消毒,当浓度达到0.06L/m3,用ASFV、大肠杆菌和金色葡萄球菌作为生物指示剂,可以达到终末消毒效果,但对于枯草芽孢杆菌作为生物指示剂还有部分活菌残留;当浓度为0.03L/m3时,对于大肠杆菌或金黄色葡萄球菌作为生物指示剂,也可以达到了终末消毒效果。该研究为在特定环境中合理使用 MCP 提供了科学依据,可以用于操作ASFV的高等级生物安全实验室的消毒以及猪场非洲猪瘟感染的预防。

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3. Viricidal activity of several disinfectants against African swine fever virus
JIANG Cheng-gang, SUN Ying, ZHANG Fan, AI Xin, FENG Xiao-ning, HU Wei, ZHANG Xian-feng, ZHAO Dong-ming, BU Zhi-gao, HE Xi-jun
Journal of Integrative Agriculture    2021, 20 (11): 3084-3088.   DOI: 10.1016/S2095-3119(21)63631-6
摘要114)      PDF    收藏

本研究以表达eGFP重组非洲猪瘟病毒为指示病毒,通过体外细胞培养方法,模拟浸泡和喷雾方式,在室温条件下,观察消毒剂不同浓度、不同时间作用后是否产生可见荧光信号为标准,来判定病毒是否完全被消毒剂灭活。结果显示,模拟浸泡消毒方式,在室温条件下,碘酸混合溶液0.5%浓度,作用10分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;过硫酸氢钾复合粉0.25%浓度作用30分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;枸橼酸粉0.25%浓度作用30分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;二氯异氰脲酸钠粉0.125%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;戊二醛癸甲溴铵溶液0.2%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;癸甲溴铵溶液0.5%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒。模拟喷雾消毒方式,在室温条件下,碘酸混合溶液0.5%浓度,作用10分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;过硫酸氢钾复合粉0.25%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;枸橼酸粉0.5%浓度作用30分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;二氯异氰脲酸钠粉0.25%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;戊二醛癸甲溴铵溶液0.2%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒;癸甲溴铵溶液0.5%浓度作用60分钟能完全灭活非洲猪瘟病毒。这些结果表明,常用市售6种消毒剂,在实验室条件下,不同浓度和作用时间均能有效灭活非洲猪瘟病毒,本实验建立了一种应用表达eGFP重组非洲猪瘟病毒为指示病毒,快速准确评价消毒剂灭活非洲猪瘟病毒效果的方法,为非洲猪瘟的生物安全防控提供有力理论依据和技术支持。


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4. Development of Double Antibody Sandwich ELISA for Detection of Duck or Goose Flavivirus
NIU Hui-min, HUANG Xin-mei, HAN Kai-kai, LIU Yu-zhuo, ZHAO Dong-min, ZHANG Jing-feng, LIU Fei, LI Tong-tong, ZHOU Xiao-bo, LI Xiang-rui , LI Yin
Journal of Integrative Agriculture    2013, 12 (9): 1638-1643.   DOI: 10.1016/S2095-3119(13)60332-9
摘要1229)      PDF    收藏
In order to establish double antibody sandwich enzyme-linked immunosorbent assay (DAS-ELISA) for detection of duck or goose flavivirus, polyclonal antibody against the flavivirus strain JS804 in geese and monoclonal antibody against the E protein of flavivirus strain JS804 in geese were used as the capture antibody and detection antibody, respectively. The optimal dilution of the capture antibody and detecting antibody capable of detecting the flavivirus strain JS804 in geese were 1:3 200 and 1:160 in the check-board titration, respectively. The reaction time of sample was 1 h, and the optimal working dilution of HRP-labeled goat-anti-mouse IgG was 1:10 000. The positive standard value was 0.247 (OD450 nm). The geese flavivirus could be detected at a minimal concentration of 1.875 μg mL-1. The ELISA had no cross-reaction with Newcastle disease virus (NDV), Avian influenza virus (AIV), Infectious bronchitis virus (IBV), Infectious bursal disease virus (IBDV), Duck hepatitis virus (DHV), and Gosling plague virus (GPV). Twenty clinical samples were detected by the DAS-ELISA and RT-PCR respectively, with the agreement rate of 75%. The results revealed that the DAS-ELISA possessed favorable specificity and higher sensitivity, indicating a suitable method for rapid detection of the duck or goose flavivirus.
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